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當(dāng)前位置:首頁(yè)產(chǎn)品中心分子生物學(xué)試劑內(nèi)切酶F5591S-100 rxns快速內(nèi)切酶 BglII

快速內(nèi)切酶 BglII
產(chǎn)品簡(jiǎn)介

LabFD™快速內(nèi)切酶是一系列經(jīng)過(guò)基因工程重組、能夠在5~15分鐘內(nèi)精確完成DNA切割的高保真限制性內(nèi)切酶,適用于質(zhì)粒DNA、PCR產(chǎn)物或基因組DNA等的快速酶切。LabFD™快速內(nèi)切酶具有如下特點(diǎn):5~15分鐘內(nèi)即可完成酶切;共用一種酶切Buffer,大大簡(jiǎn)化酶切反應(yīng)體系;良好的酶活冗余度,輕松應(yīng)對(duì)底物過(guò)量或困難模板酶切。
快速內(nèi)切酶 BglII

產(chǎn)品型號(hào):F5591S-100 rxns
更新時(shí)間:2026-01-08
廠商性質(zhì):代理商
訪問(wèn)量:443
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品牌其他品牌供貨周期現(xiàn)貨
應(yīng)用領(lǐng)域食品/農(nóng)產(chǎn)品,化工,生物產(chǎn)業(yè),農(nóng)林牧漁,制藥/生物制藥

                 BglII快速內(nèi)切酶



產(chǎn)品貨號(hào):F5591s

儲(chǔ)存條件:-20℃


產(chǎn)品組成

組分

規(guī)格

LabFDBglII

100ul

10×LabFD™ Buffer

1ml

10×LabFD™ Color Buffer

1ml


產(chǎn)品簡(jiǎn)介

LabFD™快速內(nèi)切酶是一系列經(jīng)過(guò)基因工程重組、能夠在5~15分鐘內(nèi)精確完成DNA切割的高保真限制性內(nèi)切酶,適用于質(zhì)粒DNA、PCR產(chǎn)物或基因組DNA等的快速酶切。LabFD™快速內(nèi)切酶具有如下特點(diǎn):5~15分鐘內(nèi)即可完成酶切;共用一種酶切Buffer,大大簡(jiǎn)化酶切反應(yīng)體系;良好的酶活冗余度,輕松應(yīng)對(duì)底物過(guò)量或困難模板酶切。此外,LABLEAD去磷酸化、連接試劑在LabFD™酶切Buffer中具有100%活性,支持一管化反應(yīng),提升“酶切-修飾-連接"的體驗(yàn)。

活性定義

37℃下,在20ul反應(yīng)體系中,1ul酶能夠在15 min內(nèi)wanquan消化1ugλDNA (HindIII digest)。

建議反應(yīng)條件

LabFD™緩沖液;

37℃溫育;

參照“DNA快速酶切流程"配制反應(yīng)體系。

失活條件

80℃溫育20min。

質(zhì)量控制

功能活性檢測(cè)

最適反應(yīng)溫度下,在20ul反應(yīng)體系中,1ul LabFD™ BglII能夠在15min內(nèi)wanquan消化1ug λDNA。

超長(zhǎng)時(shí)間溫育檢測(cè)

最適反應(yīng)溫度下,將1ul LabFD™ BglII與1ug λDNA共同溫育3h,未檢測(cè)到其他核酸酶污染或星號(hào)活性引起的底物非特異性降解,延時(shí)酶切可能出現(xiàn)星號(hào)活性。

酶切-連接-再酶切檢測(cè)

最適反應(yīng)溫度下,使用1ul LabFD™ BglII消化底物,回收酶切產(chǎn)物。在22℃下使用適量Fast T4 DNA Ligase可以將酶切產(chǎn)物重新連接。將連接產(chǎn)物再次回收后,使用相同的內(nèi)切酶可以重新切開(kāi)連接產(chǎn)物。

非特異性內(nèi)切酶活性檢測(cè)

最適反應(yīng)溫度下,將1ul LabFD™ BglII與1ug超螺旋質(zhì)粒DNA共同溫育4h,使用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),質(zhì)粒DNA仍然處于超螺旋狀態(tài)。

藍(lán)白斑檢測(cè)

將含有單一lacZα基因的載體以1ul LabFD™ BglII消化,重新連接后轉(zhuǎn)化入大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞,涂布在含有對(duì)應(yīng)抗生素、IPTG和 X-gal的LB培養(yǎng)基平板上。連接正確的產(chǎn)物會(huì)生長(zhǎng)出藍(lán)色菌落,而連接錯(cuò)誤(即DNA末端切口不完整)的產(chǎn)物將得到白色菌落。對(duì)于 LabFD™ 系列限制酶而言,白色菌落比例應(yīng)小于 1%。

使用方法

1.DNA快速酶切流程

1)在冰上按如下建議的加樣順序配制反應(yīng)體系:


質(zhì)粒DNA

PCR產(chǎn)物

基因組DNA

ddH2O

15ul

16ul

30ul

10×LabFD Buffer或10×LabFD Color Buffer

2ul

3ula

5ul

底物DNA

2ul(up to 1ug)

10ul(~0.2ug)

10ul(5ug)

LabFD BglII

1ul

1ul

5ul

Total

20ul

30ul

50ul




注:本體系適用于經(jīng)過(guò)純化的PCR產(chǎn)物酶切,未純化的PCR具備一定的離子強(qiáng)度,10xLabFDTMbuffer加入量可適當(dāng)減少至2ul。但由于DNA聚合酶同時(shí)具有外切酶活性,會(huì)影響酶切產(chǎn)物,因此如下一步需進(jìn)行克隆等操作,建議酶切前對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行純化。


2)輕柔吸打或輕彈管壁以混勻(切勿渦旋),然后瞬時(shí)離心以收集掛壁液滴;

3)37℃溫育15min(質(zhì)粒),或15~30min(PCR產(chǎn)物),或30~60min(基因組DNA);

4)80℃溫育20min即可使酶失活,停止反應(yīng)。

2.雙酶切或多酶切

1)每種快速內(nèi)切酶的用量為1ul,并根據(jù)需要適當(dāng)擴(kuò)大反應(yīng)體系;

2)所有快速內(nèi)切酶的體積總和不得超過(guò)總反應(yīng)體系的1/10;

3)如果所用的幾種快速內(nèi)切酶的最適反應(yīng)溫度不同,應(yīng)先以最適溫度低的酶開(kāi)始酶切,再添加最適溫度較高的酶,在其最適反應(yīng)溫度下進(jìn)行酶切反應(yīng)。

3.適用于質(zhì)粒的擴(kuò)大反應(yīng)體系

DNA

1ug

2ug

3ug

4ug

5ug

LabFDBglII

1ul

2ul

3ul

4ul

5ul

10×LabFD™ Buffer或10×LabFD™ Color Buffer

2ul

2ul

3ul

4ul

5ul

Total

20ul

20ul

30ul

40ul

50ul

注:如果總反應(yīng)體系大于20ul,應(yīng)適當(dāng)增加溫育時(shí)間,盡量使用水浴、金屬浴或沙浴。

不同DNA中的酶切位點(diǎn)數(shù)量

λDNA

ΦX174

pBR322

pUC57

pUC18/19

SV40

M13mp18/19

Adeno2

6

0

0

0

0

0

1

11

甲基化修飾影響

Dam

Dcm

CpG

EcoKI

EcoBI

無(wú)影響

無(wú)影響

無(wú)影響

無(wú)影響

序列可能重疊

剪切受阻

在不同反應(yīng)緩沖液中的活性


LabFD Buffer

Thermo Scientific

FastDigest Buffer

NEB

CutSmart®Buffer

Takara

QuickCut™Buffer

活性

100%

100%

100%

50%

注:活性數(shù)據(jù)來(lái)LABLEAD限制酶標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)體系下的檢測(cè)。




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